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产品信息
1.Tiosbio? GelRed?是新型无毒核酸染料，GelRed?独特的油性和大分子量特点使其不能穿透细胞膜进入细胞内，艾姆斯氏实验表明其诱变性远远小于EB。
2.灵敏度高：适用于各种大小片段的电泳染色，对核酸迁移的影响小于SYBR Green I。
3.稳定性高：适用于微波或其它加热方法制备的琼脂糖凝胶；室温下的酸、碱缓冲液极其稳定，耐光性强。
4.耐光性强：实验室的日常光线照射6个月仍可保证性能稳定。
5.信噪比好：样品荧光信号强，背景信号低，荧光亮度是EB的10倍以上，肉眼可观测到亮度明显比EB强。
6.操作简单：与EB一样，在预制胶和电泳过程中染料不降解；而电泳后染色过程也只需30分钟且无需脱色或冲洗，即可直接用紫外凝胶透射仪观察。
7.适用范围广：可选择电泳前染色（胶染法）或电泳后染色（泡染法）；适用于琼脂糖凝胶或聚丙烯酰胺凝胶电泳；可用于dsDNA、ssDNA 或RNA 染色。
8.完美兼容：与EB有相同的光谱特性，无需改变滤光片及观察装置：标准的EB 滤光片或SYBR 滤光片都适用，使用与观察EB相同的普通紫外凝胶透射仪观察即可，在300nm紫外光附近可得到最佳激发。
| 名称 | GelRed? | GelGreen? | Sybr Green I | EB | Goldview |
| 灵敏度 | 高 | 高 | 高 | 低 | 低 |
| 稳定性 | 高 | 高 | 低 | 高 | 高 |
| 对DNA
迁移影响 |
条带不弯曲 | 条带不弯曲
DNA不迁移 |
染料浓度高时，
条带易发生弯曲迁移 |
条带不弯曲
DNA不迁移 |
条带不弯曲
DNA不迁移 |
| 安全性 | 安全无毒。独特的油性大分子量；不易挥发；不易吸入；不能穿透细胞膜进入活体细胞，无诱变性，无致癌性 | 安全无毒。独特的油性大分子量；不易挥发；不易吸入；不能穿透细胞膜进入活体细胞，无诱变性，无致癌性 | 花箐染料，能透过细胞膜进入活体细胞内，但容易生物降解，不会在体内残留，安全无毒。 | 分子量小，易挥发升华，易吸入人体，不易生物降解，在体内长期残留。易引起有机体突变，强诱变剂和高致癌物。 | 主要成分为吖啶橙，高毒，致癌，高诱变性。易挥发升华，易吸入人体，能穿透细胞膜进入活体细胞内，不易生物降解，体内长期残留。 |
| 适用性 | 与EB光谱特性一致，无需改变滤光片及观察装置。普通紫外凝胶透射仪可用，300nm 紫外光附近可得到最佳激发。 | 254nm紫外凝胶透射仪或可见光凝胶透射仪观察。 | >100bp产物电泳染色， 254nm激发的紫外凝胶透射仪或可见光凝胶透射仪观察。 | >100bp产物电泳染色，背景荧光信号高；普通紫外凝胶透射仪观察。 | >100bp产物电泳染色，背景荧光信号高； 254nm 激发的紫外凝胶透射仪或可见光凝胶透射仪观察。 |
包装量及储存条件
500μL/支。
2~8℃避光保存12月。
注意事项
Q：GelRed?/GelGreen?与核酸的结合机制是什什么？
A：GelRed?/GelGreen?通过静电及电荷相互作用与核酸结合。
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Q：GelRed?/GelGreen?检测下限多少？
A：GelRed?/GelGreen?是超敏感的染料，可检测含量低至0.1ng的DNA。仪器灵敏度和曝光设置均影响检测极限。
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Q：GelRed?/GelGreen?的使用量是多少？
A: 10000×储备液用于1×甚至0.5×预制凝胶使用量1:10000～1:20000(例如: 5μL用于50～100mL 凝胶)，或1:3333 比例用于电泳后染色(15μL用于50 mL溶液)。
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Q：GelRed?/ GelGreen?需要在黑暗中使用吗？
A：GelRed?和GelGreen?长期储存需避光，但可在室内光线下使用。
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Q：哪些仪器可用于GelRed?和GelGreen?的检测？
A：标准（302或312nm）紫外透射成像仪可用于检测GelRed?。254 nm的紫外透射仪、可见光激发的凝胶成像仪（如Dark Reader）或488nm凝胶激光扫描仪均可检测GelGreen?。
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Q：GelRed?和GelGreen?适用于什么样的发射滤波片？
A：GelRed?适用于溴化乙锭滤片; GelGreen?适用于SYBR Green或黄色滤片。另外，GelRed?或GelGreen?均适用于长通道黄色滤片。
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Q：marker电泳为何有时分辨率会不高？
A：GelRed?比EB 分子大，在预制胶中对DNA 的迁移有一定影响。建议采用后染法以保证DNA迁移的真实水平。
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Q：如何提高预制凝胶的条带分离效果？
A：①减少DNA上样量。过量的DNA样本容易造成污染和微笑条带。推荐已知浓度样品的上样量为50~200ng/泳道。对于未知浓度的样品，尝试1/2或1/3的常用上样量。
?? ②减少GelRed?在凝胶中的总量，GelRed?再稀释一倍后使用比如用0.5×的浓度来代替1×的浓度。
?? ③降低琼脂糖凝胶的百分比浓度。高分子量DNA在低百分比的琼脂糖凝胶分离效果更好。
?? ④更换电泳缓冲液。含硼酸盐的TBE 缓冲液导电性比TAE缓冲液更好。
?? ⑤为了避免染料可能对DNA迁移的干扰，建议使用电泳后染胶。
?? ⑥电泳时电压不宜过高，一般TBE缓冲也电压不要超过120V，TAE 不要超过 100 V。
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Q：GelRed?/GelGreen?迁移的方向？
A：相对EB，GelRed?和GelGreen?不容易通过凝胶迁移。电泳缓冲液中不需要添加额外的染料，凝胶染色更均匀。
Q: 为何有时会出现污染或微笑的DNA条带或错误的DNA迁移条带?
A: GelRed?和GelGreen?在预制凝胶电泳中会影响DNA 的迁移，尤其国产的某些限制性酶切marker或DNA样本，可能会在GelRed?预制凝胶中发生异常迁移。
Q：GelRed?荧光弱，性能降低，或后染法琼脂糖凝胶中仍有染料是什么原因?
A : 溶解的染料可能沉淀了。将GelRed?45~50℃加热2min，搅拌至染料溶解。另外应室温储存染料，以免沉淀。
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Q：后染法需要去除染料的步骤吗？
A: 不需要，但高背景的凝胶可通过适当脱色降低背景。
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Q： GelRed?和GelGreen?可用于单链DNA或RNA的染色吗？
A：可以，GelRed?对单链核酸染效果比GelGreen?敏感5倍左右。
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Q：GelRed?/ GelGreen?凝胶可以预制、储存吗？
A：完整的GelRed?/GelGreen?预制琼脂糖凝胶可在4℃避光贮存。
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Q：GelRed?/GelGreen?的预制胶可以重复使用吗？
A：不可以，连续电泳会降低染色强度。
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Q: 预制的GelRed?/GelGreen?凝胶可以重新融化再制备吗？
A: 是的，预制胶溶化后最好再添加一些染料，保证重新制备凝胶的信号强度。
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Q：GelRed?/ GelGreen?电泳后染色可重复使用吗？
A：可以。如果敏感度降低，则建议更换新鲜的染料溶液。
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Q：GelRed?及GelGreen?与克隆、连接、测序的下游扩增子兼容吗？
A: 兼容。由于GelRed?/GelGreen?与DNA结合比EB更紧密，需要去除样品DNA中的染料，以确：笮僮。
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Q：GelRed?/GelGreen?安全性如何？
A：GelRed?/GelGreen?经过埃姆斯AMS及相关测试，已经被证明是可替代EB和SYBR，更安全的染料。但使用这些试剂也要遵循实验室安全条例，以免污染DNA等样品。
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Q：GelRed?和GelGreen?用后应该如何处置？
A：GelRed?和GelGreen?通过TUV认证测试，及中国农科院的斑马鱼测试，可以直接倒入下水道。但不同国家和地区的规定可能存在差异，请联系当地的安全监管部门获取相关信息。
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Q：GelRed?可用于脉冲凝胶电泳和凝胶迁移电泳分析吗？
A：可用于EMSA和PFGE凝胶的电泳后染色。
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Q：GelRed?/GelGreen?染色的胶可用于Southern或Northern杂交吗？对转膜或杂交过程有干扰吗？
A: 建议使用后染法。
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Q：GelRed?可以用于检测RNA的甲醛变性胶吗？
A: 可以。
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Q：GelRed?可用聚丙烯酰胺、DGGE、EMSA 实验或PFGE（脉冲。┠郝？
A：可以，需使用后染法。
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Q：GelRed?可用于彗星试验（单细胞凝胶电泳测定技术，一种单链或双链DNA突变和破损的遗传测定法）吗？
A: 可以。
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Q：GelRed?可用于碱性凝胶电泳缓冲液（30mM NaOH，1mM EDTA）吗？可用于氯化铯梯度纯化DNA的染色吗？
A: 可以。正丁醇萃取前，加SDS至终浓度0.1％，可去除纯化的DNA中的GelRed?。
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Q：GelRed?和GelGreen?在DMSO 和水中两种溶剂中的溶解性及效果是否存在差异？
A: 两种溶剂的效果相似。
常见问题